ТЕХНОЛОГИЯ КОМПЛЕКСНОЙ ПЕРЕРАБОТКИ ПЛОДОВО-ЯГОДНОГО СЫРЬЯ
Возможность получения пектина на основе линии по производству сладких настоек
Анализ литературных источников показал, что в настоящее время актуальной задачей является создание принципиально нового подхода к процессу настаивания морсов с целью максимального использования плодово-ягодного сырья, получения продуктов с повышенным содержанием минеральных и органических веществ, к разработке ресурсосберегающих технологий производства алкогольных продуктов с повышенной биологической ценностью из плодово-ягодного и растительного сырья.
Одним из способов интенсификации процесса настаивания может быть использование новых типов ротационного оборудования [27].
В настоящее время в ряду актуальных проблем стоит рациональное использование первичных сырьевых ресурсов, а также комплексная переработка и безопасная утилизация вторичных сырьевых ресурсов. Для ее решения требуется наращивание производственной базы перерабатывающей отрасли агропромышленного комплекса, улучшение использования сырья посредством разработки и создания новых прогрессивных, энергосберегающих технологий комплексной переработки ценных вторичных сырьевых ресурсов на основе последних достижений науки и техники.
Проблема увеличения производства высококачественных пектиновых веществ и расширения их ассортимента является частью решения этой проблемы [35, 49].
Одним из важнейших направлений увеличения объемов производства пектинсодержащих пищевых изделий является расширение сырьевой базы пектинсодержащего сырья за счет нетрадиционных источников и разработка новых способов получения пектинопродуктов из традиционного и нетрадиционного промышленного сырья, поэтому актуальными являются исследования по разработке технологий получения пектина и пектинопродуктов из плодовой оболочки (створки) хлопчатника, виноградных, айвовых выжимок, кормового арбуза, тыквы, коры хвойных деревьев. Способы получения пектина из различного растительного сырья можно представить в виде схемы (рис. 3.1).

Рис. 3.1. - Способы получения пектиновых веществ из плодово-ягодного сырья
Ранее проводимые исследования [129-140] и нормативные данные по получению спиртованных морсов (ТР 10-04-03-09-88), представленные в табл. 3.1 показывают, что введение янтарной кислоты повышает выход экстрактивных веществ и осаждение пектина, но, тем не менее, переход органических веществ недостаточен.
Таблица 3.1. Физико-химические характеристики экстрактов
Показатели |
Спиртованный морс клюквы |
Спиртованный морс красной рябины |
||
По типовой технологии |
Двукратное настаивание в присутствии ЯК |
По типовой технологии |
Двукратное настаивание в присутствии ЯК |
|
Содержание экстрактивных веществ г/100 см3 |
3,2 |
5,46 |
9,7 |
11,4 |
Содержание сахаров, г/100 см3 |
1,3 |
2,2 |
2,3 |
3.71 |
Содержание растворенных пектиновых веществ, г/100 см3 |
0,210 |
0,004 |
0,386 |
0,001 |
Количество выделенных пектиновых веществ, г/100 см3 |
- |
0,455 |
- |
0,536 |
Содержание титруемых кислот, г/100 см3 |
1,0 |
1,04 |
1,5 |
1,65 |
Содержание белковых веществ, г/100 см3 |
0,328 |
0,016 |
0,81 |
0,025 |
Использование ультразвуковых колебаний в качестве фактора, ускоряющего диффузионный процесс, является весьма перспективным. Нелинейное распространение ультразвуковых колебаний и связанное с ними большое ускорение частиц является одним из факторов интенсификации диффузионных процессов. Ультразвук высоких, кавитационных интенсивностей способен разрушать макромолекулы в растворе и клетки в суспензии, тогда как при низких интенсивностях, сопровождающихся лишь микротечениями в жидких средах, приводит лишь к ускорению биологических процессов.
В последнее время благодаря развитию электроники были разработаны более компактные и менее дорогие установки, что способствовало их более широкому внедрению.
Проводимые исследования по комплексной переработке плодово-ягодного сырья с использованием промышленной установки роторно-пульсационного типа «S-эмульгатор» позволили провести процесс гидролиз-экстракции свежих ягод клюквы и рябины при температуре в пределах от 29,0 °C до 30,6 °C. В таблице 3.2 представлены технологические параметры обработки сырья в РПА.
Таблица 3.2. Технологические параметры об] |
работки сырья в РПА |
|||
Наименование показателей |
Контроль 1 (клюква) |
Опыт 1 (клюква) |
Контроль 2 (рябина) |
Опыт 2 (рябина) |
Температура начальная, °C |
12 |
11 |
18 |
18,5 |
Температура конечная, °C |
30 |
29 |
30 |
28 |
Гидромодуль |
1:3 |
1:3 |
1:3 |
1:3 |
V S, об ./мин |
3700 |
3300-3400 |
4000-5000 |
4000-4100 |
Т, мин |
10 |
10 |
7 |
7 |
Для экспериментальных исследований были приготовлены следующие образцы:
- 1. Контроль (клюкву экстрагировали водой при гидромодуле 1:3).
- 2. Опыт 1 (клюкву экстрагировали водой при гидромодуле 1:3 в присутствии гидролизующего агента - янтарной кислоты).
- 3. Контроль (рябину экстрагировали водой при гидромодуле 1:5).
- 4. Опыт 2 (рябину экстрагировали водой при гидромодуле 1:5 в присутствии гидролизующего агента - янтарной кислоты).
Гидромодуль и концентрация гидролизующего агента выбраны на основании проводимых ранее исследований [138].
Физико-химические показатели водного гидролизата ягод клюквы и рябины представлены в табл. 3.3.
Таблица 3.3. Физико-химические показатели водного гидролизата ягод
Наименование опытов |
Общее содержание с.в., г/100см3 |
Содержание определяемых веществ, г/см3 |
Содержание титруемых кислот, г/100 см3 |
pH |
||||
Общие сахара |
Белковые вещества |
Пектиновые вещества |
ВМС |
нмс |
||||
Контроль! |
6,42 |
0,3129 |
0,161 |
0,1431 |
2,319 |
3,789 |
1,13 |
2,43 |
Опыт 1 |
9,25 |
0,3300 |
0,163 |
0,843 |
3,801 |
5,449 |
1,19 |
2,35 |
Koi прол ь 2 |
6,5 |
0,64 |
0,03 |
0,105 |
2,57 |
3,93 |
2,15 |
3,52 |
Опыт 2 |
8,214 |
0,89 |
0,12 |
0,254 |
2,883 |
5,331 |
4,52 |
3,36 |
Проведение гидролиз-экстракции в ультразвуковой установке позволяет значительно увеличить переход экстрактивных веществ в раствор, как высокомолекулярных, так и низкомолекулярных.
Использование дополнительного гидролизующего агента (янтарной кислоты) к природным кислотам повышает переход в растворенное состояние условно растворимых веществ, что значительно повысило выход общих экстрактивных веществ. Влияние гидролизующего агента на содержание сухих веществ в экстрактах представлено на рисунке 3.2.

? клюква ? рябина
Рис.3.2. Влияние гидролизующего агента на содержание сухих веществ в экстрактах
Как свидетельствуют представленные на рис. 3.2 данные, в опытных образцах общее содержание сухих веществ увеличивается.
Отделение выпавших в осадок нерастворимых и труднорастворимых органических веществ из гидролизата исследуемого сырья проводилось на лабораторной центрифуге.
Полученные данные по выходу гидролизата по массе и объему и после центрифугирования гидролизата и мезги приведены в табл. 3.4
Таблица 3.4. Выход гидролизатов после обработки в РПА и центрифугирования____________________________________________
Наименование опытов |
Количество гидролизатов |
Общее количество водного фильтрата после центрифугирования, л |
Общее количество осадка после центрифугирования, кг |
|
л |
кг |
|||
Контроль 1 |
4.583 |
4,571 |
4,340 |
0,402 |
Опыт 1 |
4,520 |
4,482 |
4.220 |
0.384 |
Контроль 2 |
2,030 |
2,056 |
1,837 |
0.403 |
Опыт 2 |
2,190 |
2,231 |
1,985 |
0.403 |
Результаты анализов содержания определяемых веществ в фильтрованных гидролизатах и осадков органических веществ после центрифугирования представлены в таблицах 3.5 и 3.6 соответственно.
Таблица 3.5. Содержание определяемых веществ в фильтрованных __________ водных гидролизатах _________________________
Наименование опытов |
Общее содержание растворимых С.В, г/100 см3 |
Сахара, г/100 см3 |
Растворимые белки, г/100 см3 |
Пектиновые вещества, г/100 см3 |
Содержание титруемых кислот, г/100 см3 |
ОВП, mV |
pH, ед. pH |
Контроль 1 |
2,14 |
0,0061 |
0,0013 |
0,264 |
0,623 |
285 |
2,49 |
Опыт 1 |
2,646 |
0,0042 |
0,0013 |
0,201 |
0,406 |
286 |
2,54 |
Контроль 2 |
7,448 |
0,0209 |
0,0015 |
0,105 |
0,525 |
170 |
3,23 |
Опыт 2 |
8,075 |
0,0080 |
0,0015 |
0,254 |
0,301 |
177 |
3,24 |
Таблица 3.6. Содержание определяемых веществ в мезге после
центрифугирования
Наименование опытов |
Общий вес выделенных веществ, г |
Содержание определяемых веществ в выделенном осадке |
Содержание растворимых сухих веществ |
||||||
Влага |
Зола |
Сухие вещества |
|||||||
% |
г |
% |
г |
% |
г |
% |
г |
||
Контроль 1 |
402 |
75,2 |
302.3 |
0,19 |
0.764 |
24,8 |
99,696 |
24.62 |
98,972 |
Опыт 1 |
384 |
78,4 |
301,1 |
0,17 |
0,654 |
21,6 |
82,944 |
21,43 |
82,291 |
Контроль 2 |
403 |
68,7 |
276,7 |
0,40 |
1,602 |
31,3 |
126,140 |
30,90 |
124,53 |
Опыт 2 |
403 |
67,5 |
272,0 |
0,39 |
1,572 |
32,5 |
130,975 |
32,11 |
129,41 |
Выделенный из водного гидролизата осадок органических веществ (мезга) был проанализирован на содержание сахаров, белковых и пектиновых веществ. Результаты представлены в табл. 3.7.
Таблица 3.7. Содержание сахаров, белковых и пектиновых веществ в мезге
Наименование опытов |
Содержание сухих веществ |
Содержание определяемых органических веществ |
|||
общие, г/100 з см |
растворимые, г/100 см3 |
сахара, г/100 см3 |
белковые вещества, г/100 см3 |
пектиновые вещества, г/100 см3 |
|
Контроль 1 |
2,1753 |
2,1596 |
0,0047 |
следы |
1,456 |
Опыт 1 |
1,8350 |
1,8200 |
0,0046 |
следы |
1,010 |
Контроль 2 |
6,2140 |
6,1340 |
0,0062 |
следы |
1,884 |
Опыт 2 |
5,9810 |
5,9090 |
0,0060 |
следы |
0,962 |
Согласно полученным экспериментальным данным растворимых белков в гидролизате после центрифугирования очень мало, а в осадке обнаружены только их следы во всех экспериментах. Содержание сахаров также незначительно. Полученные экспериментальные данные позволяют сделать предположение, что в процессе обработки в РПА произошло сахарокислотное гелеобразование и другие взаимодействия в том числе с белковыми веществами.
Полученные первичные результаты требуют более развернутых исследований, но в то же время эти результаты подтверждают данные других авторов [11, 86] по применению ультразвукового воздействия (диспергирования).
Осаждение органических веществ из водного гидролизата проводили этиловым спиртом до крепости: 35 % об.; 50 % об. и 70 % об.
Полученные экспериментальные данные по выходу осажденных органических веществ представлены в таблице 3.8.
Таблица 3.8. Комплекс биополимеров преимущественно
полисахаридной природы
Наименование опытов |
Вес осажденных органических веществ, г/100 см3 |
||
Содержание спирта, % об. |
|||
35 |
50 |
70 |
|
Контроль 1 |
3,0004 |
3,4104 |
4,1299 |
Опыт 1 |
3,1504 |
4,8207 |
5,0299 |
Контроль 2 |
3,4402 |
3,5801 |
3,2499 |
Опыт 2 |
3,6003 |
3,6097 |
3,4204 |
Осаждение органических веществ спиртом проводили из гидролизата объемом 500 мл во всех экспериментах.
Как показывают данные, представленные в таблицах 3.9, 3.10, использование более высокой концентрации спирта позволяет наиболее полно осаждать органические вещества из полученных водных гидролизатов ягодного сырья, что в дальнейшем будет способствовать получению стойких к помутнениям спиртованных морсов и соков, а в дальнейшем - настоек изготовленных на их основе,.
Кроме того, более полное удаление нерастворимых и малорастворимых в спирте и водоспиртовой среде органических веществ исключает в дальнейшем такие операции, как оклейка, обработка холодом, ферментативная обработка, и повышает сроки хранения готовой продукции.
Таблица 3.9 - Физико-химические показатели морсов из ягод клюквы
Наименование опытов |
Крепость %об. |
Содержание титруемых кислот, г/100 см3 |
Значение PH, ед. pH |
|
Контроль 1 |
1.1 |
35 |
4,25 |
2,63 |
1.2 |
50 |
3,73 |
2,81 |
|
1.3 |
70 |
3,5 |
3,13 |
|
Опыт 1 |
2.1 |
35 |
6,8 |
2,81 |
2.2. |
50 |
5,85 |
2,88 |
|
2.3 |
70 |
5,2 |
2,91 |
Таблица 3.10 - Физико-химические показатели морсов из ягод рябины
Наименование опытов |
Крепость %об. |
Содержание титруемых кислот, г/100 см3 |
Значение PH, ед. pH |
|
Контроль 2 |
3.1 |
35 |
2,9 |
3,51 |
3.2 |
50 |
2,6 |
3,66 |
|
3.3 |
70 |
2,3 |
3,87 |
|
Опыт 2 |
4.1 |
35 |
5,15 |
3,50 |
4.2 |
50 |
4,5 |
3,63 |
|
4.3 |
70 |
4,0 |
3,78 |
Полученные экспериментальные данные по снижению концентрации титруемых кислот позволяют сделать определенные выводы:
- происходит более интенсивное образование органических соединений с кислотами, которые осаждаются спиртом и выпадают в осадок;
для всех проведенных экспериментов наблюдается закономерное образование органических нерастворимых в спирте веществ в зависимости от содержания кислот. Чем выше содержание кислот, природных и дополнительно введенных, тем больше происходит образование нерастворимых в спирте органических веществ.
Изменение активной кислотности в морсах из ягод клюквы и рябины также имеет прямую зависимость от концентрации этилового спирта.
Полученные результаты экспериментальных исследований позволяют сделать вывод, что при более высокой концентрации спирта процесс образования комплексов органических веществ и последующего их осаждения идет полнее и интенсивнее.
Полученные результаты по исследованию выделенных из морсов осадков представлены в табл. 3.11 и 3.12.
Таблица 3.11. Количественные значения осажденных органических _____________веществ при спиртовании экстрактов из ягод клюквы
Наименование опытов |
Крепость, %об. |
Общий осадок из 500 мл гидролизата, г |
Количествен. осадок, г/100см3 |
|
Контроль |
К.1.1 |
33 |
3,0004 |
0,6001 |
К. 1.2 |
50 |
3,4104 |
0,6821 |
|
К. 1.3 |
70 |
4,1300 |
0,8260 |
|
Опыт |
0.1.1 |
33 |
3,1504 |
0,6301 |
0.1.2 |
50 |
4,8206 |
0,9641 |
|
0.1.3 |
70 |
5,0299 |
1,0060 |
Таблица 3.12. Количественные значения осажденных органических веществ при спиртовании экстрактов из ягод рябины
Наименование опытов |
Крепость, %об. |
Общий осадок из 500 мл гидролизата, г |
Количествен, осадок, г/100см3 |
|
Контроль |
К.2.1 |
35 |
3,4402 |
0,6880 |
К.2.2 |
50 |
3,6012 |
0,7120 |
|
К.2.3 |
70 |
3,7500 |
0,7800 |
|
Опыт |
0.2.1 |
33 |
3,6003 |
0,7201 |
0.2.2 |
50 |
3,6097 |
0,7219 |
|
0.2.3 |
70 |
3,6204 |
0,7441 |
Как свидетельствуют представленные в табл. 3.11, 3.12 данные, выход осажденных органических веществ увеличивается с повышением концентрации этилового спирта.
Результаты, полученные при изучении физико-химических показателей спиртованных растворов (морсов) представлены в табл. 3.13,3.14.
Таблица 3.13. Содержание определяемых веществ в спиртованных
растворах (морсах)
Наименование опытов |
Крепость, % об. |
Содержание растворимых с.в. |
Определяемые вещества в сухих растворимых веществах |
|||
Сахара, г/100 см3 |
Белковые вещества, г/100 см3 |
Пектиновы е вещества, г/100 см3 |
||||
Контроль 1 |
К.1.1 |
33 |
0,0168 |
следы |
0,0792 |
|
К. 1.2 |
50 |
0,0141 |
следы |
0,0081 |
||
К. 1.3 |
70 |
0,0080 |
следы |
0,0003 |
||
Опыт 1 |
0.1.1 |
33 |
0,0329 |
следы |
0,0061 |
|
0.1.2 |
50 |
0,0292 |
следы |
0,0003 |
||
0.1.3 |
70 |
0,0134 |
следы |
следы |
||
Контроль 2 |
К.2.1 |
3 |
0,0120 |
следы |
0,1694 |
|
К.2.2 |
50 |
0,0118 |
следы |
0,0821 |
||
К.2.3 |
70 |
0,0102 |
следы |
0,0004 |
||
Опыт 2 |
0.2.1 |
33 |
0,0130 |
следы |
0,0951 |
|
0.2.2 |
50 |
0,0097 |
следы |
0,0068 |
||
0.2.3 |
77 |
0,0091 |
следы |
0,0007 |
Таблица 3.14. Изменение показателей титруемой и активной кислотности спиртованных морсов в зависимости от концентрации этилового спирта ___________________________________________
Наименование опытов |
Крепость , % об. |
Титруемая кислотность, г/100 см3 |
pH, ед. pH |
|
Контроль 1 |
К.1.1 |
33 |
0,298 |
2,63 |
К. 1.2 |
50 |
0,265 |
2,81 |
|
К. 1.3 |
70 |
0,245 |
3,13 |
|
Опыт 1 |
0.1.1 |
33 |
0,476 |
2,91 |
0.1.2 |
50 |
0,410 |
2,81 |
|
0.1.3 |
70 |
0,364 |
2,88 |
|
Контроль 2 |
К.2.1 |
3 |
0,200 |
3,51 |
К.2.2 |
50 |
0,180 |
3,66 |
|
К.2.3 |
70 |
0,160 |
3,87 |
|
Опыт 2 |
0.2.1 |
33 |
0,360 |
3,50 |
0.2.2 |
50 |
0,320 |
3,63 |
|
0.2.3 |
77 |
0,280 |
3,78 |
Из данных представленных в табл. 3.13, 3.14, следует, что содержание сахаров снижается с увеличением концентрации этилового спирта как в опытных образцах, так и в контрольных. Количество пектиновых веществ в спиртованных экстрактах незначительно и также снижается с увеличением концентрации этилового спирта, причем в опытных образцах их значительно меньше. Белковых веществ в экстрактах практически не обнаружено. Титруемая кислотность с увеличением концентрации этилового спирта в экстрактах снижается.
Полученные экспериментальные данные позволяют сделать следующие выводы:
- - повышение концентрации спирта при спиртовании водных гидролизатов позволяет более полно осадить нерастворимые и труднорастворимые в спирте вещества;
- - происходит образование комплексов органических веществ с кислотами, так как закономерно происходит снижение содержания органических кислот как в контроле 1 и 2, так и в опытах 1 и 2.
Снижение значений титруемой кислотности, согласно данным табл. 3.13, подтверждают закономерность процессов, протекающих при гидролизе в РПА и спиртовании. Произошло образование органических комплексов с органическими сахарами, белковыми и пектиновыми веществами. Изменилась закономерно активная кислотность (pH).
В образцах с использованием янтарной кислоты, по всей видимости, происходит усиление гидролиза высокомолекулярных веществ и последующее связывание их в органические комплексы, что установлено по выходу осадков как из водных гидролизатов, так и из спиртованных растворов.
Определение содержания пектиновых веществ в спиртованных морсах показало, что пектин почти полностью перешел в осадок.
Сравнивая данные, полученные в результате экспериментальных исследований можно сделать вывод, что из водного гидролизата и спиртованных морсов удалось полностью извлечь белковые и почти полностью пектиновые вещества. Поскольку кальций-пектатный метод имеет погрешность на моносахара, остаточные количества пектиновых веществ, определенные в спиртованных морсах, вероятно, можно отнести к моносахарам.
Проведенные экспериментальные исследования по использованию ультразвука при гидролиз-экстракции в водной кислой среде показали значительные преимущества перед традиционными методами получения спиртованных морсов и соков из ягодного сырья.